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小鼠肺泡上皮細胞 MLE-12的應用

2021/4/19 8:59:34

背景[1-3]

小鼠肺泡上皮細胞MLE-12為HPV16E6、E7和ras基因共轉(zhuǎn)化的C57BL/C(H-2b)小鼠肺上皮細胞,分離自小鼠肺泡上皮組織。

小鼠肺泡上皮細胞 MLE-12

細胞培養(yǎng)步驟:

培養(yǎng)基及培養(yǎng)凍存條件準備:

1)準備RPMI-1640培養(yǎng)基;優(yōu)質(zhì)胎牛血清,10%;雙抗,1%。

2)培養(yǎng)條件:氣相:空氣,95%;二氧化碳,5%。溫度:37攝氏度,培養(yǎng)箱濕度為70%-80%。

3)凍存液:90%血清,10%DMSO,現(xiàn)用現(xiàn)配。

細胞處理:

1)復蘇細胞:將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入4mL培養(yǎng)基混合均勻。在1000RPM條件下離心4分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細胞懸液加入培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過夜(或?qū)⒓毎麘乙杭尤?50px皿中,加入約8ml培養(yǎng)基,培養(yǎng)過夜)。第二天換液并檢查細胞密度。

2)細胞傳代:如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳代培養(yǎng)。

傳代方法:

1.棄去培養(yǎng)上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。

2.加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培養(yǎng)瓶中,置于37℃培養(yǎng)箱中消化1-2分鐘,然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加少量培養(yǎng)基終止消化。

3.按6-8ml/瓶補加培養(yǎng)基,輕輕打勻后吸出,在1000RPM條件下離心4分鐘,棄去上清液,補加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻。

4.將細胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中。

應用[4][5]

用于乙酰化修飾JAK2/STAT3對AngⅡ誘導小鼠肺泡上皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)分化影響的機制研究

研究JAK2/STAT3信號通路對AngⅡ誘導小鼠肺泡上皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)分化的影響。

方法:(1)復制小鼠肺泡上皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)分化模型,依次用濃度為0.1umol/l、lumol/l、10umol/l的AngⅡ干預貼壁生長的MLE-12細胞,48h后收集蛋白,Western blot檢測α-SMA表達,明確AngⅡ的干預濃度。

(2)將體外培養(yǎng)MLE-12細胞分為正常對照組、DMSO對照組、AngⅡ刺激組、AngⅡ+AG490組,正常對照組給予10ul PBS,DMSO對照組給予10umol/LDMSO+lumol/LAngⅡ,AngⅡ刺激組給予1 umol/L AngⅡ,AngⅡ+AG490組給予1 Oumol/L AG490+1umol/L AngⅡ,干預30min后收集蛋白,采用Western blot檢測信號通路蛋白:JAK2、磷酸化JAK2(p-JAK2)、STAT3、磷酸化STAT3(p-STAT3)的表達水平。

(3)分組干預48h后收集蛋白,檢測上皮細胞的標記物E-鈣黏素(E-cadherin),間質(zhì)細胞的標記物平滑肌肌動蛋白(α-SMA)及促纖維化因子TGF-β的表達,通過上皮向間質(zhì)轉(zhuǎn)分化的標記物,評估JAK2/STAT3信號通路在參與AngⅡ誘導小鼠肺泡上皮細胞向成纖維細胞轉(zhuǎn)分化過程中的作用。

(4)分組干預48h后,用CCK8法檢測不同干預藥物對MLE-12細胞活性的影響。

結(jié)果:(1)不同濃度AngⅡ?qū)LE-12細胞表達α-SMA的影響。與空白對照組相比,lumol/1 AngⅡ干預48h后MLE-12細胞表達的α-SMA顯著增加(P<0.05),繼續(xù)增加AngⅡ干預濃度,MLE-12細胞表達的α-SMA未進一步增加,故本研究中采用lumol/l AngⅡ干預MLE-12細胞48h來復制肺泡上皮轉(zhuǎn)分化模型。

(2)AngⅡ上調(diào)MLE-12細胞中JAK2/STAT3信號通路蛋白的表達。正常體外培養(yǎng)的MLE-12較少表達p-JAK2、p-STAT3,加入AngⅡ誘導30min后JAK2、STAT3無明顯變化,而反應信號通路活化狀態(tài)的p-JAK2、p-STAT3水平則明顯升高(P<0.01)。

參考文獻

[1]Role of the JAK/STAT signaling pathway in diabetic nephropathy.Marrero Mario B,Banes-Berceli Amy K,Stern David M,Eaton Douglas C.American journal of physiology.Renal physiology.2006

[2]STAT-1 Signaling in Human Lung Fibroblasts Is Induced by Vanadium Pentoxide through an IFN-βAutocrine Loop.Aurita Antao-Menezes,Elizabeth A.Turpin,Phillip C.Bost,Jessica P.Ryman-Rasmussen,James C.Bonn.J.Immunol.2008

[3]Quality of Life,Pulmonary Function,and Tomographic Scan Abnormalities After ARDS.Joan R.Masclans,Oriol Roca,Xavier Munoz.Chest.2011

[4]Stat3 Dimerization Regulated by Reversible Acetylation of a Single Lysine Residue.Zheng-long Yuan,Ying-jie Guan,Devasis Chatterjee,Y.Eugene Ch.Science.2005

[5]盧森.乙?;揎桱AK2/STAT3對AngⅡ誘導小鼠肺泡上皮細胞間質(zhì)轉(zhuǎn)分化影響的機制研究[D].東南大學,2015.

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