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免疫染色二抗稀釋液的應(yīng)用

2024/5/11 9:12:25 作者:云霄

背景[1-3]

免疫染色二抗稀釋液是一種用于免疫染色實驗中稀釋二抗的試劑。其主要目的是通過稀釋抗體來防止抗體效價下降,并減少抗體在組織上的非特異性吸附。這種稀釋液通常由TBS(Tris Buffered Saline,三羥甲基氨基甲烷緩沖鹽溶液)、明膠、BSA(牛血清白蛋白)、防腐劑等成分組成。

使用免疫染色二抗稀釋液時,需要參考所用的二抗的說明書,以及樣品中目的蛋白的含量,按照適當(dāng)?shù)谋壤ㄈ?:1000至1:500)稀釋二抗。稀釋后的二抗可以直接用于非熒光免疫染色實驗。此外,一次免疫染色結(jié)束后,可以回收稀釋的二抗,在4℃保存,以便下次使用。根據(jù)不同的產(chǎn)品說明,稀釋后的二抗可以在一定的時間范圍內(nèi)(如1至2周)重復(fù)使用數(shù)次。

免疫染色二抗稀釋液.png

免疫染色二抗稀釋液

免疫染色二抗稀釋液通常用于稀釋熒光或酶標(biāo)記的二抗,以減少非特異性結(jié)合并提高信號強度。以下是一些建議和注意事項:

選擇適當(dāng)?shù)南♂屢海撼S玫南♂屢河蠵BS、TBS、Tween-PBS等。選擇哪種取決于您使用的一抗和二抗的特性。

避免過度稀釋:雖然稀釋可以提高信號強度,但過度稀釋可能會導(dǎo)致信號太弱或背景噪音增加。建議從較高的濃度開始,然后逐漸稀釋到所需的濃度。

考慮pH值:某些抗體可能對pH值敏感。在稀釋之前,檢查二抗的說明書或與供應(yīng)商聯(lián)系,了解推薦的pH范圍。

避免使用含有疊氮鈉的緩沖液:疊氮鈉是一種常用的防腐劑,但它可能會與某些熒光染料反應(yīng),導(dǎo)致信號減弱或消失。

儲存:一旦稀釋,建議盡快使用。如果需要儲存,應(yīng)將其存放在4°C,并在24小時內(nèi)使用。避免多次凍融。

檢查非特異性結(jié)合:在正式實驗之前,可以使用沒有一抗的樣品進(jìn)行預(yù)實驗,以檢查二抗的非特異性結(jié)合。

考慮背景噪音:確保您的樣品制備和洗滌步驟足夠嚴(yán)格,以減少背景噪音。

使用對照:為了確保實驗的準(zhǔn)確性,建議使用適當(dāng)?shù)膶φ?,如陽性對照、陰性對照和無關(guān)抗體對照。

考慮二抗的濃度:根據(jù)實驗的需要和一抗的濃度,可能需要調(diào)整二抗的濃度。通常,從較低的濃度開始,然后逐漸增加,直到獲得最佳信號。

避免交叉反應(yīng):確保您使用的二抗與您的一抗是特異性匹配的。如果可能的話,進(jìn)行交叉反應(yīng)測試。

應(yīng)用[4][5]

免疫染色二抗稀釋液可以用于基于Mhp336蛋白的豬肺炎支原體ELISA抗體檢測方法的建立

豬肺炎支原體ELISA抗體檢測方法的建立目的:建立較為靈敏的豬肺炎支原體ELISA抗體檢測方法。

方法:首先確定檢測方法的最佳反應(yīng)條件,包括抗原包被濃度的確定、封閉液的選擇、封閉時間的確定、一抗稀釋比例、一抗孵育時間、免疫染色二抗稀釋液稀釋比例、二抗孵育時間、顯色時間和檢測方法的判定標(biāo)準(zhǔn)。然后進(jìn)行批內(nèi)重復(fù)性試驗、批間重復(fù)性試驗、特異性試驗和靈敏性試驗。最后用建立的方法對226份臨床豬血清樣品進(jìn)行檢測,并與本實驗室前期建立的基于Mhp366蛋白的ELISA抗體檢測試劑盒以及IDEXX公司的Mhp抗體試劑盒進(jìn)行比較。

結(jié)果:確定抗原包被濃度為0.05μg/mL,封閉液為2.5%脫脂奶粉,封閉時間為1h,一抗稀釋比例為1:500,一抗孵育時間為0.5 h,免疫染色二抗稀釋液稀釋比例為1:10 000,二抗孵育時間為1h,顯色時間為5 min,檢測方法的臨界值為0.332。批內(nèi)重復(fù)性試驗和批間重復(fù)性試驗的變異系數(shù)均低于7%,特異性和靈敏性良好。226份臨床臨床豬血清樣品的檢測結(jié)果表明本研究建立的檢測方法具有較高的靈敏性。結(jié)論:建立了基于Mhp336蛋白的豬肺炎支原體ELISA抗體檢測方法,該方法具有良好的重復(fù)性,特異性和靈敏性。該方法的靈敏性高于本實驗室前期建立的檢測方法。

參考文獻(xiàn)

[1]Development of an ELISA for distinguishing convalescent sera with Mycoplasma hyopneumoniae infection from hyperimmune sera responses to bacterin vaccination in pigs.[J].Ding Honglei;Wen Yukang;Xu Zuobo;Zhou Bingqian;Tlili Chaker;Tian Yaqin;Wang Zhaodi;Ning Yaru;Xin Jiuqing.Veterinary medicine and science,2021

[2]Perspectives for improvement of Mycoplasma hyopneumoniae vaccines in pigs[J].Maes Dominiek;Boyen Filip;Devriendt Bert;Kuhnert Peter;Summerfield Artur;Haesebrouck Freddy.Veterinary Research,2021

[3]Pathogenicity&virulence of Mycoplasma hyopneumoniae.[J].Leal Zimmer Fernanda M A;Paes Jéssica Andrade;Zaha Arnaldo;Ferreira Henrique Bunselmeyer.Virulence,2020

[4]Functional Identification and Structural Analysis of a New Lipoate Protein Ligase in Mycoplasma hyopneumoniae.[J].Zhu Kemeng;;Chen Huan;;Jin Jin;;Wang Ning;;Ma Guixing;;Huang Jiandong;;Feng Youjun;;Xin Jiuqing;;Zhang Hongmin;;Liu Henggui.Frontiers in cellular and infection microbiology,2020

[5]董青霜.基于Mhp336蛋白的豬肺炎支原體ELISA抗體檢測方法的建立[D].西南大學(xué),2024.

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