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兔血清的應用

2024/5/6 10:44:29 作者:云霄

背景[1-3]

兔血清是采用健康兔的血液為原料,經(jīng)無菌采集、分離、微孔過濾后制成的一種生物試劑。它的主要成分為血漿中除去纖維蛋白后分離出的淡黃色透明液體,具有維持血液的正常粘度、酸堿度、滲透壓等作用。兔血清的性狀為澄清液體,無噬菌體,內(nèi)毒素低,無溶血、無異物、無菌、無支原體等,因此,它被廣泛用于生化相關(guān)科研試驗。

兔血清.png

兔血清

具體來說,兔血清在多個領(lǐng)域有重要應用:

1.細胞培養(yǎng):兔血清可以作為細胞培養(yǎng)的基礎(chǔ)培養(yǎng)基成分,為細胞提供必要的營養(yǎng)和生長因子,促進細胞的生長和增殖。

2.免疫學實驗:兔血清可用于制備抗體、抗原等免疫學試劑,以及用于免疫沉淀、免疫熒光等實驗,有助于研究免疫系統(tǒng)的功能和機制。

3.生物化學實驗:在生物化學實驗中,兔血清可用于酶活性測定、蛋白質(zhì)定量、核酸分析等,幫助科研人員了解生物體內(nèi)的生物化學過程和機制。

4.藥理學和毒理學實驗:兔血清也可用于藥物代謝、藥物動力學等藥理學實驗,以及用于檢測毒物對生物體的影響,如毒性、致畸性等。

兔血清的儲存條件通常為-15℃~-20℃,有效期一般為五年。為確保其質(zhì)量和穩(wěn)定性,在使用過程中應遵循相關(guān)操作規(guī)程和注意事項。

需要注意的是,不同來源的兔血清可能存在差異,因此在選擇和使用兔血清時需要根據(jù)實驗需求進行選擇和優(yōu)化。此外,由于兔血清中含有多種成分,可能會對某些細胞產(chǎn)生不良影響,因此在使用時需要謹慎評估其對細胞的影響。

應用[4][5]

兔血清可以用于針刀療法對膝骨關(guān)節(jié)炎模型兔血清中MMP-3和MMP-13濃度的影響

觀察針刀治療后KOA模型兔血清中MMP-3和MMP-13濃度的變化,進而初步探討針刀療法治療膝骨關(guān)節(jié)炎的作用機制。研究目的大量臨床研究顯示針刀療法是有效治療膝骨關(guān)節(jié)炎的方法之一,本研究通過觀察針刀治療后膝骨關(guān)節(jié)炎兔模型血清中MMP-3和MMP-13含量變化的影響,以初步探討MMPs與骨關(guān)節(jié)炎的關(guān)系,從而闡述針刀療法治療膝骨關(guān)節(jié)炎的作用機制,為針刀松解法治療膝骨關(guān)節(jié)炎的臨床應用提供實驗依據(jù)。

研究方法將48只健康清潔6月齡新西蘭家兔(雌雄各半,體重2.25±0.1kg)隨機分為4組,每組各12只,四組分別為空白組、模型組、針刀組和電針組??瞻捉M不參加造模,其余三組采用左后肢伸直位固定制動法制備實驗性膝骨關(guān)節(jié)炎家兔模型。模型組不進行干預,針刀組每周干預治療1次,電針組每周干預3次,兩組均干預3周。干預結(jié)束3周后,采用酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)檢測模型兔血清中MMP-3和MMP-13的濃度,分析針刀松解法對血清中MMPs含量的影響。研究結(jié)果在針刀和電針治療前和治療后,分別對模型組、針刀組和電針組實驗兔用改良Lequesne MG評估方法進行行為學觀察。

結(jié)果顯示治療前3組行為學評分值沒有顯著差異(P>0.05),治療后,針刀組、電針組與模型組相比分值明顯下降,差異顯著,具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。ELISA檢測兔KOA血清中MMP-3、MMP-13水平的結(jié)果表明:模型組血清中MMP-3、MMP-13含量明顯增加,與其它組相比差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);針刀組血清中MMP-3、MMP-13含量顯著降低,與模型組及電針組相比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

研究結(jié)論針刀療法能夠降低膝骨關(guān)節(jié)炎模型兔血清中MMP-3和MMP-13的濃度,因此針刀療法能減少軟骨細胞外基質(zhì)的降解,抑制關(guān)節(jié)軟骨的破壞,控制軟骨的退行性改變,達到改善膝骨關(guān)節(jié)炎的癥狀、治療KOA的作用。

參考文獻

[1]Optical Tomography of MMP Activity Allows a Sensitive Noninvasive Characterization of the Invasiveness and Angiogenesis of SCC Xenografts[J].Wa'el Al Rawashdeh;;Susanne Arns;;Felix Gremse;;Josef Ehling;;Ruth Knüchel-Clarke;;Stefan Kray;;Felix Sp?ler;;Fabian Kiessling;;Wiltrud Lederle.Neoplasia,2014(3)

[2]The role of subchondral bone resorption pits in osteoarthritis:MMP production by cells derived from bone marrow[J].A.Shibakawa;;K.Yudoh;;K.Masuko-Hongo;;T.Kato;;K.Nishioka;;H.Nakamura.Osteoarthritis and Cartilage,2005(8)

[3]Increased stromelysin-1(MMP-3),proteoglycan degradation(3B3-and 7D4)and collagen damage in cyclically load-injured articular cartilage[J].Peggy M.Lin;;Chih-Tung Christopher Chen;;Peter A.Torzilli.Osteoarthritis and Cartilage,2004(6)

[4]Linkage of chondrocyte apoptosis and cartilage degradation in human osteoarthritis[J].SanshiroHashimoto;Robert L.Ochs;SetsuroKomiya;MartinLotz.Arthritis&Rheumatism,2004(9)

[5]馬麗娜.針刀療法對膝骨關(guān)節(jié)炎模型兔血清中MMP-3和MMP-13濃度的影響[D].北京中醫(yī)藥大學,2016.

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