背景[1-3]
RAT ANTI C-MYC是一類可以特異性結(jié)合ANTI-C-MYC的抗大鼠多克隆抗體,主要用于檢測大鼠模型ANTI-C-MYC的Western Blot、IHC-P、IF、ELISA、Co-IP等多種免疫學(xué)實驗。
檢測原理:雙抗體夾心法測定標(biāo)本中ANTI-C-MYC水平。用純化的ANTI-C-MYC抗體包被微孔板,制成固相抗體,往包被單抗的微孔中依次加入ANTI-C-MYC,再與HRP標(biāo)記的ANTI-C-MYC抗體結(jié)合,形成抗體-抗原-酶標(biāo)抗體復(fù)合物,經(jīng)過徹底洗滌后加底物TMB顯色。TMB在HRP酶的催化下轉(zhuǎn)化成藍(lán)色,并在酸的作用下轉(zhuǎn)化成最終的黃色。顏色的深淺和樣品中的ANTI-C-MYC呈正相關(guān)。用酶標(biāo)儀在450nm波長下測定吸光度(OD值),通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計算樣品中ANTI-C-MYC濃度。
c-myc基因是myc基因家族的重要成員之一,c-myc基因既是一種可易位基因,又是一種多種物質(zhì)調(diào)節(jié)的可調(diào)節(jié)基因,也是一種可使細(xì)胞無限增殖,獲永生化功能,促進(jìn)細(xì)胞分裂的基因,myc基因參于細(xì)胞凋零,c-myc基因與多種腫瘤發(fā)生發(fā)展有關(guān)。
C-myc基因的產(chǎn)物為62KD的磷酸化蛋白P62c-mgc,是由C-myc基因的外顯子2和3共同編碼的由439個氨基酸組成的蛋白質(zhì),定位細(xì)胞核內(nèi),為核蛋白,依C-one編碼產(chǎn)物,功能分類,C-myc癌基因?qū)俸说鞍谆?,具有轉(zhuǎn)化細(xì)胞的能力,并具有與染色體、DNA結(jié)合的特性,在調(diào)節(jié)細(xì)胞生長、分化及惡性轉(zhuǎn)化中發(fā)揮作用。
C-Myc蛋白在結(jié)構(gòu)上可分為轉(zhuǎn)錄激活區(qū),非特異DNA結(jié)合區(qū),核靶序列,堿性區(qū),螺旋一環(huán)一螺旋(HLH)及亮氨酸拉鏈區(qū),在已知的轉(zhuǎn)錄因子中可介導(dǎo)蛋白的寡聚化,這兩個區(qū)同時存在是C-myc蛋白所特有的,在其它蛋白質(zhì)中,很少發(fā)現(xiàn)。在C-Myc蛋白中,螺旋一環(huán)一螺旋緊隨著堿性區(qū),揭示其以特異性序列方式和DNA相互作用
應(yīng)用[4][5]
用于基于c-Myc/CLIC4通路探究脂多糖致大鼠海馬損傷的致病機制研究
通過建立內(nèi)毒素血癥模型,從組織水平、細(xì)胞水平及分子水平三個層次探究LPS致海馬損傷的發(fā)生發(fā)展機制。
應(yīng)用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)對PC12細(xì)胞進(jìn)行基因編輯,從而驗證c-Myc/CLIC4通路在LPS誘導(dǎo)PC12細(xì)胞凋亡中的作用機制。為LPS致海馬損傷的發(fā)病機制提供新思路,并為今后臨床開展內(nèi)毒素血癥致海馬損傷的治療及進(jìn)行相關(guān)的機制研究提供理論依據(jù)及試驗基礎(chǔ)。
在體試驗選取36只健康雄性SD大鼠,隨機均分為CON組和LPS組。LPS組腹腔注射1 mL/kg LPS(10 mg/mL),CON組腹腔注射1 mL/kg生理鹽水。造模4 h后經(jīng)心臟采血并處死大鼠,開顱,分離大腦皮層后取海馬備用。
通過檢測大鼠血清中相關(guān)炎癥指標(biāo),觀察海馬組織病理學(xué)變化,觀察海馬超微組織結(jié)構(gòu)變化,檢測線粒體途徑凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)量,以及檢測c-Myc/CLIC4通路的mRNA水平及蛋白表達(dá)量,闡明線粒體凋亡途徑在LPS致海馬損傷中的致病機制,并探究c-Myc/CLIC4通路是否參與對線粒體凋亡途徑的調(diào)控。
體外試驗中,選用PC12細(xì)胞,分成5組,分別為CON組,LPS組,sgc-Myc組,sgCLIC4組,sgCON組。sgc-Myc組,sgCLIC4組細(xì)胞分別用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)編輯c-Myc基因、CLIC4基因。
并做如下處理:CON組更換新完全培養(yǎng)基;其他各組更換含200μg/mL LPS的完全培養(yǎng)基。應(yīng)用流式細(xì)胞術(shù),Annexin V-FITC及Western blot等方法檢測敲除c-Myc及CLIC4基因后細(xì)胞凋亡水平的變化,從而證實c-Myc/CLIC4通路對線粒體凋亡途徑的調(diào)控作用。
參考文獻(xiàn)
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