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gRNA文庫(kù)構(gòu)建的流程

2020/2/19 8:06:22

背景[1-6]

gRNA文庫(kù)構(gòu)建基本原理是通過(guò)一段與靶標(biāo)DNA相同的gRNA指導(dǎo)Cas9核酸酶對(duì)靶向基因進(jìn)行DNA修飾,以此造成基因的功能突變或缺失。在此基礎(chǔ)上,利用CRISPR/Cas9技術(shù)建立哺乳動(dòng)物全基因組突變庫(kù)或者與某類功能相關(guān)的基因突變體庫(kù),通過(guò)功能性篩選和富集以及隨后的PCR擴(kuò)增和深度測(cè)序分析,發(fā)掘與篩選表型相關(guān)的基因,稱為CRISPR/Cas9 gRNA文庫(kù)篩選。

gRNA文庫(kù)是藥物篩選或靶向篩選特定通路的理想工具,gRNA文庫(kù)的建立將在功能基因篩選、疾病機(jī)制研究及藥物研發(fā)等方面發(fā)揮重要的功能。gRNA文庫(kù)包括:全基因組文庫(kù)、lncRNA文庫(kù)、信號(hào)通路、細(xì)胞凋亡、細(xì)胞增殖、離子通道、核受體相關(guān)、各種疾病相關(guān)等文庫(kù)。全基因組gRNA文庫(kù)的構(gòu)建可以針對(duì)任何類型的基因組DNA,包括ORF cDNA,lncRNA cDNA以及特定區(qū)域的cDNA片段等。能夠針對(duì)全長(zhǎng)cDNA乃至基因組DNA構(gòu)建高效的gRNA文庫(kù),適用于高通量功能基因及相關(guān)藥物靶點(diǎn)篩選。

CRlSPR/Cas9 gRNA文庫(kù)篩選大體流程分為五步,即gRNA文庫(kù)選擇,gRNA文庫(kù)擴(kuò)增,gRNA文庫(kù)慢病毒包裝,gRNA文庫(kù)篩選,PCR擴(kuò)增和NGS測(cè)序。

1、gRNA文庫(kù)選擇

首先客戶選擇所需gRNA文庫(kù)。如果客戶根據(jù)具體需要提出文庫(kù)定制(小于300個(gè)基因),我們將根據(jù)客戶提供的基因群信息進(jìn)行單個(gè)基因的gRNA設(shè)計(jì),保證每個(gè)基因設(shè)計(jì)3個(gè)不同的gRNA,程度確保基因功能的突變。采用的載體是單/雙慢病毒載體,單慢病毒載體是一個(gè)載體上同時(shí)攜帶單個(gè)gRNA和cas9基因,雙慢病毒載體是一個(gè)載體上只有單個(gè)gRNA,cas9蛋白則由單獨(dú)攜帶cas9的載體提供。這兩種模式載體均攜帶有額外的抗性篩選標(biāo)記。

2、gRNA文庫(kù)擴(kuò)增

上述構(gòu)建的載體數(shù)量較少,不足以進(jìn)行文庫(kù)的慢病毒包裝和使用。因此,需要對(duì)上述載體進(jìn)行擴(kuò)增,增加總量。上述gRNA載體構(gòu)建完成后,我們將這些載體按相同的比例混合成一個(gè)pool(即載體混合庫(kù)),隨后將載體混合庫(kù)使用專用電轉(zhuǎn)感受態(tài),電轉(zhuǎn)擴(kuò)增培養(yǎng)并收集菌落,并進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),最后抽提質(zhì)粒,即得到了擴(kuò)增后的載體混合庫(kù),也就是文庫(kù)。

3、gRNA文庫(kù)慢病毒包裝

擴(kuò)增后的gRNA文庫(kù)在慢病毒包裝載體的輔助下轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞,進(jìn)行慢病毒的包裝。由于gRNA文庫(kù)是由多個(gè)不同的gRNA載體混合而成,因此獲得的慢病毒是混合型病毒庫(kù),每個(gè)病毒攜帶單個(gè)gRNA載體。

4、gRNA文庫(kù)篩選

對(duì)篩選的目的細(xì)胞進(jìn)行病毒感染預(yù)實(shí)驗(yàn),得到細(xì)胞在較低的MOI時(shí)感染百分?jǐn)?shù),以確認(rèn)感染時(shí)gRNA文庫(kù)的病毒用量。慢病毒庫(kù)以較低的MOI值感染細(xì)胞(確保每個(gè)細(xì)胞最多進(jìn)入一個(gè)慢病毒),隨后根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康亩鴮?duì)細(xì)胞采用相應(yīng)的處理,最后經(jīng)過(guò)不同的篩選方式富集細(xì)胞。以耐藥性基因篩選實(shí)驗(yàn)為例,根據(jù)前期藥物IC50實(shí)驗(yàn),得到藥物篩選實(shí)驗(yàn)的處理濃度。采用高濃度藥物處理感染后的細(xì)胞,經(jīng)過(guò)篩選后存活的細(xì)胞則具有一定的耐藥性,將此群細(xì)胞擴(kuò)增并收集下來(lái),耐藥性的來(lái)源是CRlSPR/Cas9 gRNA對(duì)相應(yīng)基因的修飾。

5、PCR擴(kuò)增和NGS測(cè)序

對(duì)步驟4篩選中富集下來(lái)的細(xì)胞進(jìn)行慢病毒載體的PCR擴(kuò)增,該擴(kuò)增片段包含載體所攜帶的gRNA序列,通過(guò)后續(xù)的NGS測(cè)序,可以得到富集細(xì)胞中g(shù)RNA的富集度,從而尋找到相應(yīng)的基因,這些基因很有可能參與藥物作用過(guò)程,因此可作為深入研究的待選基因。

應(yīng)用[7][8]

gRNA文庫(kù)構(gòu)建的流程可用于通路或疾病相關(guān)基因的篩選:

在利用CRISP/Cas9技術(shù)敲除C57BL/6小鼠中的RelB基因,為核因子(nuclear factor,NF)-κB轉(zhuǎn)錄因子蛋白家族的RelB基因與腫瘤轉(zhuǎn)移等方面的研究提供RelB基因敲除實(shí)驗(yàn)動(dòng)物模型。方法:利用基因編輯技術(shù)CRISPR/Cas9系統(tǒng),設(shè)計(jì)并構(gòu)建針對(duì)目的基因RelB第4外顯子sgRNA,同時(shí)利用T7 RNA聚合酶體外轉(zhuǎn)錄Cas9 mRNA。取C57BL/6小鼠受精卵體外注射sgRNA和Cas9 mRNA后,進(jìn)行胚胎移植,實(shí)現(xiàn)靶基因敲除。

待小鼠出生后提取DNA并進(jìn)行PCR鑒定,獲得F0代,后與野生型交配后繁殖,取樣提取DNA,測(cè)序分析鑒定后獲得F1代小鼠,并在蛋白質(zhì)水平和基因組水平分別驗(yàn)證敲除效果。結(jié)果:獲得了4個(gè)在RelB基因突變的首建鼠,并得到了穩(wěn)定遺傳的RelB基因敲除小鼠。基因組測(cè)序結(jié)果示,敲除實(shí)驗(yàn)組中RelB的mRNA出現(xiàn)無(wú)義突變,令其mRNA翻譯終止。與對(duì)照組相比,敲除實(shí)驗(yàn)組檢測(cè)不到RelB蛋白表達(dá)。同時(shí),Western blot結(jié)果顯示,NF-κB家族中其他成員RelA、p50和p52的蛋白表達(dá)不受影響。

參考文獻(xiàn)

[1]Lycium ruthenicum polysaccharide attenuates inflammation through inhibiting TLR4/NF-κB signaling pathway[J].Qiang Peng,Huajing Liu,Shihui Shi,Ming Li.International Journal of Biological Macromolecules.2014

[2]Development and Applications of CRISPR-Cas9 for Genome Engineering[J].Patrick D.Hsu,Eric S.Lander,Feng Zhang.Cell.2014

[3]Dual sgRNAs facilitate CRISPR/Cas9‐mediated mouse genome targeting[J].Jiankui Zhou,Jianying Wang,Bin Shen,Li Chen,Yang Su,Jing Yang,Wensheng Zhang,Xuemei Tian,Xingxu Huang.FEBS J.2014(7)

[4]ZFN,TALEN,and CRISPR/Cas-based methods for genome engineering[J].Thomas Gaj,Charles A.Gersbach,Carlos F.Barbas.Trends in Biotechnology.2013(7)

[5]Reporter Mouse Lines for Fluorescence Imaging[J].Takaya Abe,Toshihiko Fujimori.Develop.Growth Differ..2013(4)

[6]Clustered regularly interspaced short palindromic repeats(CRISPRs):the hallmark of an ingenious antiviral defense mechanism in prokaryotes[J].Sinan Al-Attar,Edze R.Westra,John van der Oost,Stan J.J.Brouns.Biological Chemistry.2011(4)

[7]The two NF-κB activation pathways and their role in innate and adaptive immunity[J].Giuseppina Bonizzi,Michael Karin.Trends in Immunology.2004(6)

[8]徐幟,孫文博,張妍妍,許勇,唐金海.利用CRISPR/Cas9技術(shù)建立RelB敲除小鼠模型[J].南京醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2019,39(03):313-319.

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