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TCMK-1 小鼠腎小管上皮細胞系的應用

2024/2/5 8:33:51 作者:云霄

背景[1-3]

TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系是一種來源于小鼠腎小管上皮細胞的細胞系,常用于研究腎臟疾病的發(fā)生機制、藥物篩選和毒性評價等。該細胞系具有以下特點:

來源:TCMK-1細胞系來源于小鼠腎小管上皮細胞,經過多次傳代和篩選,形成了一個相對穩(wěn)定的細胞系。

形態(tài)特征:TCMK-1細胞呈多邊形或長條形,大小約為15-30微米,胞質豐富,核大而圓,核仁明顯。

生長特性:TCMK-1細胞生長迅速,傳代周期約為24-48小時,可在含有10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基中穩(wěn)定生長。

特異性標志物:TCMK-1細胞表達多種特異性標志物,如Ksp-cadherin、AQP1、AQP2、AQP3、AQP4、NHE3、Na-K-ATPase等,可用于鑒定其腎小管上皮細胞特性。

其他特性:TCMK-1細胞還具有一定的增殖能力,可用作研究腎臟疾病發(fā)生機制和藥物篩選的模型。

TCMK-1 小鼠腎小管上皮細胞系.png

TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系

TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系培養(yǎng)操作

1)復蘇TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系:以下細胞培養(yǎng)凍存處理僅供參考,具體操作步驟以隨貨產品說明書為主。

將含有1 mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加4 mL培養(yǎng)基混合均勻。在1000 rpm條件下離心3 min,棄去上清液,加1-2 mL培養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細胞懸液加入含適量培養(yǎng)基的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過夜(或將細胞懸液加入10 cm皿中,加入約8 mL培養(yǎng)基,培養(yǎng)過夜)。第二天換液并檢查細胞密度。

2)TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系傳代:如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳代培養(yǎng)。

a、棄去培養(yǎng)上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。

b、加1 mL消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培養(yǎng)瓶中,使消化液浸潤所有細胞,棄去消化液,將培養(yǎng)瓶置于37℃培養(yǎng)箱中消化1 min,然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加少量培養(yǎng)基終止消化。

c、按6-8 mL/瓶補加培養(yǎng)基,輕輕打勻后裝入無菌離心管中,1000 rpm離心4 min,棄去上清液,補加1-2 mL培養(yǎng)液后吹勻。

d、將細胞懸液按1:2比例分到新的含8 mL培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

3)TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系凍存:待細胞生長狀態(tài)良好時,可進行細胞凍存。下面T25瓶為例;

a、收集細胞及細胞培養(yǎng)液,裝入無菌離心管中,1000 rpm條件下離心4 min,棄去上清液,用PBS清洗一遍,棄盡PBS,進行細胞計數(shù)。

b、根據細胞數(shù)量加入無血清細胞凍存液,使細胞密度5×106~1×107/mL,輕輕混勻,每支凍存管凍存1mL細胞懸液,注意凍存管做好標識。

c、將凍存管放入-80℃冰箱,24 h后轉入液氮灌儲存。記錄凍存管位置以便下次拿取。

應用[4][5]

TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系可以用于Tisp40在腎間質纖維化中的作用和機制研究

Tisp40與腎間質纖維化的關系目的:探討Tisp40在缺血再灌注(Ischemia-reperfusion,I/R)誘導的腎間質纖維化及轉化生長因子betal(Transforming growth factor betal,TGF-β1)誘導的TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系中表達量的變化,驗證所構建的慢病毒轉染Tisp40過表達細胞系TCMK-1/Tisp40效果并在3種所構建的siRNA-Tisp40中篩選沉默效果最好的siRNA-Tisp40。

方法:體內實驗C57BL/6小鼠I/R建立腎臟纖維化動物模型,免疫組化、RT-PCR及Western blot檢測各組小鼠腎臟Tisp40的分布與表達。體外實驗采用TGF-β1(10ng/ml)刺激TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系24h建立腎細胞纖維化模型,Western blot檢測TGF-β1不同濃度(0.1,1,10ng/ml)及刺激時間(4,8,12,24,48h)下Tisp40蛋白的表達變化。在野生型TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系(TCMK-1/wildtype,TCMK-1/wt)及Tisp40過表達的TCMK-1/Tisp40細胞中,RT-PCR及Western blot檢測Tisp40 mRNA及蛋白表達變化,免疫熒光評估所構建的TCMK-1/Tisp40細胞效果。Western blot檢測Tisp40被沉默后的蛋白表達,比較三種siRNA-Tisp40(siRNAl-Tisp40,siRNA2-Tisp40,siRNA3-Tisp40)沉默效率。

結果:體內實驗假手術組小鼠(Sham)腎臟Tisp40表達較少;缺血再灌注纖維化組(I/R)中小鼠腎臟Tisp40mRNA及蛋白表達明顯增加(p<0.05),Tisp40蛋白主要表達于腎小管。體外實驗Tisp40隨TGF-β1濃度(0.1,1,10ng/ml)及刺激時間(4,8,12,24,48h)改變,表達逐漸增多,存在濃度及時間依賴性,在lOng/mlTGF-βi刺激24h后Tisp40表達基本穩(wěn)定;TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系/wt細胞在TGF-β1刺激前,僅少量表達Tisp40,TCMK-1/wt細胞及TCMK-1/Tisp40細胞經TGF-β1刺激24h后,Tisp40mRNA及蛋白表達明顯增多(p<0.05),在TGF-β1刺激前后,TCMK-1小鼠腎小管上皮細胞系/Tisp40細胞的Tisp40表達均高于TCMK-1/wt細胞(p<0.05),Tisp40過表達細胞系TCMK-1/Tisp40構建成功。3種siRNA-Tisp40均可沉默Tisp40,siRNA3-Tisp40沉默效率最高。

參考文獻

[1]Effect of adipose-derived mesenchymal stem cell transplantation on vascular calcification in rats with adenine-induced kidney disease.[J].Yokote Shinya;;Katsuoka Yuichi;;Yamada Akifumi;;Ohkido Ichiro;;Yokoo Takashi.Scientific reports,2017

[2]Adipose-derived mesenchymal stem cells employed exosomes to attenuate AKI-CKD transition through tubular epithelial cell dependent Sox9 activation.[J].Zhu Fengming;;Chong Lee Shin Octavia L S;;Pei Guangchang;;Hu Zhizhi;;Yang Juan;;Zhu Han;;Wang Meng;;Mou Jingyi;;Sun Jie;;Wang Yuxi;;Yang Qian;;Zhao Zhi;;Xu Huzi;;Gao Hui;;Yao Weiqi;;Luo Xiao;;Liao Wenhui;;Xu Gang;;Zeng Rui;;Yao Ying.Oncotarget,2017

[3]Therapeutic nuclear shuttling of YB-1 reduces renal damage and fibrosis[J].Jialin Wang;;Lydia Gibbert;;Sonja Djudjaj;;Christina Alidousty;;Thomas Rauen;;Uta Kunter;;Andreas Rembiak;;Dieter Enders;;Vera Jankowski;;Gerald S.Braun;;Jürgen Floege;;Tammo Ostendorf;;Ute Raffetseder.Kidney International,2016

[4]Curcumin attenuates cyclosporine A?induced renal fibrosis by inhibitinghypermethylation of the klotho promoter[J].Ying Hu;;Lijun Mou;;Fuye Yang;;Haiyan Tu;;Wanbing Lin.Molecular Medicine Reports,2016(4)

[5]肖程程.Tisp40在腎間質纖維化中的作用和機制研究[D].武漢大學,2018.

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