細胞氧化應激的定量評價方法大致分做三類：

1）測定由活性氧修飾的化合物；

2）測定活性氧消除系統酶和抗氧化物質的量；

3）測定含有轉錄因子的氧化應激指示物。

進一步尚有：

1）生物體內氧化應激的程度足以產生應答；

2）活體內難以蓄積；

3）在活體內不是被代謝，而是穩(wěn)定存在，等等。理解這些要點對于臨床普及推廣都很有用。

細胞增殖-毒性檢測實驗操作步驟
是用于測定細胞增殖或毒性實驗中活細胞數目的一種高靈敏度，無放射性的比色檢測法。CCK法應用非常廣泛，如藥物篩選、細胞增殖測定、細胞毒性測定、腫瘤藥敏試驗以及生物因子的活性檢測等。下面以engreen的CCK8試劑盒為例，簡要說明細胞增殖-毒性檢測的操作步驟
方法/步驟
在96孔板中配制100μl的細胞懸液。將培養(yǎng)板在培養(yǎng)箱預培養(yǎng) 24 小時 (在 37℃，5% CO2 的條件下)。
向培養(yǎng)板加入 10μl 不同濃度的待測物質。
將培養(yǎng)板在培養(yǎng)箱孵育一段適當的時間 (例如: 6,12, 24 或 48 小時)。
向每孔加入 10μl CCK8 溶液（engreen） (注意不要在孔中生成氣泡，它們會影響 OD 值的讀數)。
5. 將培養(yǎng)板在培養(yǎng)箱內孵育 1-4 小時。
用酶標儀測定在 450 nm 處的吸光度。
如果暫時不測定OD值，打算以后測定的話，可以向每孔中加10μl0.1 M HCl溶液或者1%wSDS 溶液，并遮蓋培養(yǎng)板避光保存在室溫條件下。在24小時內吸光度不會發(fā)生變化 。

細胞周期檢測的原理：

PI法是經典的周期檢測方法。PI為插入性核酸熒光染料，能選擇性的嵌入核酸DNA和RNA雙鏈螺旋的堿基之間與之結合，其結合的量與DNA的含量成正比例關系，用流式細胞儀進行分析，就可以得到細胞周期各個階段的DNA分布狀態(tài)，從而計算出各個期的百分含量。PI染色后，假設G0/G1期細胞的熒光強度為1，那么含有雙份基因組DNA的G2/M期細胞的熒光強度的理論值為2，正在進行DNA復制的S期細胞的熒光強度為1-2之間。

常用的細胞染色方法有:

1.簡單染色法,常用堿性染料如美藍等進行簡單染色;

2.革蘭氏染色法,主要包括結晶紫初染、碘液媒染、乙醇(或丙酮)脫色以及番紅復染四個過程;

3.瑞氏染色法,瑞氏染料溶劑主要是由伊紅美藍組成;

4.吉姆薩染色法,吉姆薩染色原理與結果和瑞特染色法基本相同;

5.細胞免疫熒光染色法,免疫熒光染色的主要原理是利用抗原抗體之間的特異性結合。

蛋白提取/定量

蛋白提取頻道,提供蛋白提取實驗用蛋白提取試劑盒，蛋白裂解液，蛋白濃度測定試劑盒等蛋白質實驗用試劑及耗材。其中蛋白提取系列包括：植物蛋白提取試劑盒，細胞組織蛋白提取試劑盒，胞膜/細胞核蛋白提取試劑盒，全蛋白提取試劑盒等。