名稱 PAS染色液（糖原染色液）/ PAS Staining Solution
規(guī)格 4×50mL | 4×100mL

試劑組分 
 
Compositions
200mL 400mL Storage
試劑（A）過碘酸溶液 50mL 100mL 4 ℃ 避光
試劑（B）Schiff Reagent 50mL 100mL 4 ℃ 避光
試劑（C）蘇木素染色液 50mL 100mL RT 避光
試劑（D）酸性乙醇分化液 50mL 100mL RT
Manual 1份 1份 /
 
【注】有效期12個月


自備材料 

1、 10%福爾馬林固定液
2、蒸餾水
3、乙醇


產品簡介 
糖原染色是病理學中常規(guī)的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該 法常用來顯示糖原和其他多糖，該染色液不僅能夠顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質，以及 軟骨、垂體、霉菌、真菌、色素、淀粉樣物質、基底膜等。


過碘酸（又稱高碘酸）是一種強氧化劑，它能氧化糖類及有關物質中的 1，2-乙二醇基，使之變?yōu)槎?醛與 Schiff 試劑能結合成一種品紅化合物，產生紫紅色。由于高碘酸還可氧化細胞內其他物質，使用時應注意 選擇好高碘酸濃度和氧化時間，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于過氧化，這是很關鍵的步 驟。


本糖原 PAS 染色液的特點： 采用 Phygene 特有配方技術，大大增強了染色效果；性能穩(wěn)定，特異性強；操 作簡捷，僅需 1h 左右。


使用參考 


操作步驟（僅供參考）：

1、常規(guī)固定，常采用 10%的福爾馬林，常規(guī)脫水包埋。
2、石蠟切片脫蠟入蒸餾水；冰凍切片直接入蒸餾水。
3、自來水沖洗 2～3min，再用蒸餾水浸洗 2 次。
4、置于過碘酸溶液中，室溫放置 5～8min，一般不宜超過 10min。
5、自來水沖洗 1 次，再用蒸餾水浸洗 2 次。
6、樣本放入 Schiff Reagent，置于室溫陰暗處，浸染 10～20min。
7、自來水沖洗 10min。
8、樣本置于蘇木素染色液中，染細胞核 1～2min。
9、酸性乙醇分化液分化 2～5s。
10、自來水沖洗 10～15min 后，更換雙蒸水清洗，使其返藍。
11、逐級常規(guī)乙醇脫水。 二甲苯透明，中性樹膠封固。


使用結果 

PAS 反應陽性物質>>紅色或紫紅色
細胞核>>藍色
細胞質>>深淺不一的紅色

備注：顏色深淺很大程度上取決于樣品在過碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用時間的長短。


陰性對照(可選)：

1、對照切片可以用唾液，取唾液片（過濾后用）處理 30～60min 后，與其他切片共同入過碘酸溶液。 結果應 為陰性。
2、對照片可以淀粉酶，取淀粉酶 1g 于雙蒸水或 PBS(pH5.3) 100ml，處理 30～60min 后，與其他切片共同入過 碘酸溶液。結果應為陰性。
3、如果對照片采用其自身樣本，對照片不經過碘酸溶液這一步，直接入 Schiff Reagent。染色結果：對照片呈 陰性反應，無紫紅色顆粒。

注意事項 

1、 切片脫蠟應盡量干凈，否則影響染色效果。
2、 過碘酸氧化時間不宜過久，氧化時的溫度以 18～22℃。
3、 過碘酸溶液和 Schiff Reagent 應置于 4℃密閉保存，使用時避免接觸過多的陽光和空氣。使用前， 提前 30min 取出恢復到在室溫后，避光暗處使用。
4、 酸性乙醇分化液應經常更換新液，其分化時間應該依據切片厚薄、組織的類別和酸性乙醇分化液的新舊而 定，另外分化后自來水沖洗時間應該足夠。
5、 在過碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用時間非常重要，該依據切片厚薄、組織的類別等決定。
6、 本染色液常用于常規(guī)組織切片染色，對于真菌、細胞、極其薄的切片，建議采購糖原 PAS 染色試劑盒（細 胞真菌專用）， 因為其過碘酸溶液和蘇木素溶液濃度更低，不宜過染。
7、 冷凍切片染色時間盡量要短。
8、為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

我們所提供的產品僅供科研使用，不得用于臨床診斷、治療、食品或者化妝品等用途！在您向我們訂購產品之時，表明您已經知曉我們的產品僅做科研用途，并遵守法律法規(guī)！