NotI

NotI內切酶為進口分裝，基本信息如下：

根據識別序列鄰近序列的不同，酶切效果受CG methylase導致的DNA甲基化的影響。
酶儲存液組成為：20mM Tris-HCl (pH7.8 at 25℃)，100mM NaCl，0.1mM EDTA，10mM 2-mercaptoethanol，
0.02% Triton X-100，0.2mg/ml BSA and 50% glycerol。
1X Buffer O組成為：50mM Tris-HCl (pH7.5 at 37℃)，10mM MgCl2，100mM NaCl，0.1mg/ml BSA。
1X Buffer Y組成為：33mM Tris-acetate (pH7.9 at 37℃)，10mM magnesium acetate，66mM potassium
acetate， 0.1mg/ml BSA。
酶切和連接效率：50倍過量的本內切酶消化1小時，>95％被酶切的片段可以被連接并被重新酶切(recut)。
活性單位定義：在37℃，50微升反應體系中反應1小時，將1微克的λ DNA完全分解的酶量定義為1個活性單位，即1U。
本NotI經過測試可以用于Adenovirus制備過程中需用NotI進行的線性化。 
包裝清單：

保存條件：
-20℃保存。
注意事項：
內切酶使用時宜存放在冰盒內或冰浴上，使用完畢后宜立即放置于-20℃保存。
如果發(fā)現(xiàn)預期的酶切位點不能切開，請確認是否存在甲基化干擾問題。
本產品僅限于專業(yè)人員的科學研究用，不得用于臨床診斷或治療，不得用于食品或藥品，不得存放于普通住宅內。
為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

使用說明：
1. 單酶切時可以參考如下反應體系進行：

說明：請注意把Buffer和水等充分混勻后再加入內切酶，加入內切酶后可以用槍吹打或輕輕Vortex混勻。通常參考上述條件孵育1小時已經足夠，但多孵育數(shù)小時甚至孵育過夜也不會產生負面影響。如果酶切較長時間甚至酶切過夜，可以使用更少量的酶。待酶切DNA量較大時，可以適當延長酶切時間或按比例放大酶切體系。
2. 雙酶切或多酶切時，需選擇適當?shù)目梢约嫒輧蓚€或多個內切酶的緩沖液，然后參考上表設置反應體系。如果沒有合適的緩沖液可以選擇，可以在一種酶消化完畢后進行純化，純化完畢后再進行另外一種酶切反應。