DNA嵌套缺失試劑盒
產品及特點本試劑盒用于以一段 DNA 為模板，利用 Exo III 外切酶的 3 到 5 外切活性，定向制 備該 DNA 片段的系列缺失。如果將此 DNA 片段克隆到適當的質粒中，則制備的 DNA 系列缺失可以轉化，得到系列轉化子，方便今后的后續(xù)分析。其原理示意圖如下： 本產品具有下列特點：

1. 一站式，用戶不需要單獨購買各個成分并進行優(yōu)化。

2. 定向，Exo III 外切酶只能從 5’突出的 DNA 末端對應的 3’端，或平末端 DNA 的 3’端往 5’端酶切，而從 3’突出的 DNA 末端進行酶切的活性則極低，故只要 DNA 片段同時具備上面兩種末端結構，就可以控制 ExoIII 外切酶的酶切方向。 3

. 最長可處理 10kb 左右的 DNA 片段。

4. 本產品足夠 10 次嵌套缺失實驗（含 90 個取樣點）。

5. 本產品只適用于科研，不能用于臨床。
DNA嵌套缺失試劑盒 
規(guī)格及成分 成 份 編 號 大扁盒包裝
Exo III 外切酶（200U/uL） 120420a 10 uL（紅蓋）
10×Exo III 外切酶緩沖液 120420b 100 uL（黃蓋）
Mung Bean 核酸酶(40U/uL) 120408a 130 uL（綠蓋）
10×Mung Bean 核酸酶緩沖液 120408b 1 mL（亮黃蓋）
Klenow DNA 聚合酶（5U/uL） 131015a 40 uL（紫蓋）
5×Klenow DNA 聚合酶緩沖液
（含的 NTP）
131015b 1 mL（白蓋）
DNA 溶解液 1002 15 mL
上柱結合液 190602 30 mL
離心吸附柱（窄口） 170606 50 套×2
通用洗柱液 60408 100 mL
DNA 洗脫液 3.0 170603 10 mL
2×連接反應 Mix 100213b 250uL（本色蓋）
使用手冊 100213sc 1 份

DNA嵌套缺失試劑盒運輸及保存 低溫運輸、-20℃保存, 有效期一年。

自備試劑 質粒 DNA、限制性內切酶、細菌轉化試劑

使用方法

1. 將靶 DNA 片段克隆到任何一個克隆載體中，克隆位點一邊必須有能產生 3’突出的 內切酶識別位點（此端不被酶切），另一邊有能產生 5’突出或平末端的內切酶識別 位點（此端將被酶切）。注：產生 3’突出末端的內切酶有 KpnI、PstI、SphI、 Sse83871。產生 5’突出末端或平末端的內切酶有 AccI、BamHI、EcoRI、HincII、 HindIII、SalI、SmaI、XbaI、XmaI 等。由于 SacI 能在質粒上通過星號活性產生 切口，故避免使用。ApaI、SacII 和 Sfi 產生的 3’突出末端可以被 Exo III 外 切酶酶切，故也不可用。 

2. 制備高質量的質粒 DNA。注意：常規(guī)離心吸附柱方法制備的質粒 DNA 一般都有 nick （切口），Exo III 外切酶會以這些切口為切入點外切 DNA 片段，產生隨機缺失，故 采用氯化銫密度梯度離心法制備質粒 DNA。也可以用 DNA 連接酶將切口連接 上（具體需要參考 DNA 連接酶的使用手冊，本產品不提供相關試劑）。 

3. 用一個可產生 3’突出的內切酶和一個可產生 5’突出或平末端的內切酶將 5-10ug 質粒 DNA 線性化（反應體系不要超過 250uL）。選用一種同時跟兩種酶兼容的 酶反應液。相關操作參考限制性內切酶供應商提供的手冊。本試劑盒不提供此步的 相關試劑。 

4. 取少量酶切產物電泳檢測酶切效果。注意：電泳時要用沒有酶切的質粒 DNA 做對照。

5. 如果酶切成功，則在內切酶反應液中加入等體積的 DNA 溶解液和 2 倍體積的上柱結 合液（如果酶切體系為 250uL，則加入 250uL DNA 溶解液和 500uL 上柱結合液）， 震蕩混勻后全部轉移到離心吸附柱中。

6. 室溫放置 2 分鐘后 13000g 離心 1 分鐘。

7. 加入 0.7mL 通用洗柱液，13000g 離心半分鐘。棄穿透液。 20190402dx

8. 再加入 0.3mL 通用洗柱液，13000g 離心半分鐘。棄穿透液。

9. 13000g 離心半分鐘。

10. 在離心吸附柱中加入 90uL DNA 洗脫液 3.0，室溫放置 2 分鐘。

11. 換新的收集管，13000g 離心半分鐘，得到純化的線性質粒 DNA。標記此管為 0 號。

12. 在 0 號管中加入 10uL 10×Exo III 外切酶緩沖液，吹打混勻放常溫待用。

13. 標記 N 個離心管并在每個管中各加入 100uL 1×Mung Bean 核酸酶反應液放常溫 待用。N 個離心管對應 N 個取樣點，本試劑盒足夠 90 個取樣點。每次實驗 N 設置 為多少取決于要缺失 DNA 片段的長度。一般每 300bp 需要一個取樣點。如果要缺 失 2700bp，則需要 N=2700/300=9 個取樣點。

14. 在 0 號管中迅速加入 1uL（200U）Exo III 外切酶，輕柔吹打混勻，立即放 37℃并 開始計時，1 分鐘時迅速轉移 10uL 到第 1 號裝有 100uL 1×Mung Bean 反應液 的管中終止反應。第 2 分鐘時迅速轉移 10uL 到第 2 號裝有 1×Mung Bean 反應 液的管中終止反應。依此類推，直到 N 個離心管都完成。注意：如果需要 DNA 缺 失長度間隔少于 300bp，也可以每半分鐘取樣一次。 

15. 將 N 個離心管放 65℃5 分鐘滅活 Exo III 外切酶，然后放常溫短暫離心。

16. 在每管中加入 1.3 uL（約 50U）Mung Bean 核酸酶，輕柔吹打混勻，放 37℃保 溫 30 分鐘。此步將切除單鏈 DNA 區(qū)域。

17. 在每管中加入等體積（100uL）的 DNA 溶解液和 2 倍體積（200uL）的上柱結合 液，震蕩混勻后全部轉移到離心吸附柱中。

18. 重復第 6-第 9 步操作。

19. 在離心吸附柱中加入 40uL DNA 洗脫液 3.0，室溫放置 2 分鐘。

20. 換新離心管做收集管，13000g 離心半分鐘，所得 N 個溶液即為純化的嵌套缺失系 列 DNA 的不同時間點取樣。

21. 在 N 個管中分別加入 10 uL 5×Klenow DNA 聚合酶緩沖液（含 dNTP）和 0.4 uL （2 U）Klenow DNA 聚合酶，輕柔吹打混勻，37℃保溫 15 分鐘以修平 DNA 末端。 22. 取 2.5uL 上步反應液，加到 2.5uL 2×連接液 Mix 中，16℃保溫 1 小時。

23. 取 1uL 連接樣品轉化感受態(tài)細胞，制備質粒，篩選缺失長度合適的轉化子。